한국의 동충하초 동충하초균의 연구 방법 2. 동충하초의 배양 (5) 동충하초균의 시험관 균주배양

한국의 동충하초 동충하초균의 연구 방법 2. 동충하초의 배양 (5) 동충하초균의 시험관 균주배양

 

2021년 06월 28일. 오늘도 우리 남은 인생의 첫날을 맞이하는 구름이 많이 낀 월요일로 오늘도 성재모동충하초를 잘 재배하기 위하여 보살피는 시간을 가지면서 언제나 고객님에게 고마운 마음을 드리며 바르고 천천히 흔들림이 없이 그냥 가면서 이렇게 글을 올리는 것만으로도 기적이고 축복으로 알고 걸림이 없는 하루를 보내려고 한다. 오늘 또 하루를 선물로 받았네요.

 

한국의 동충하초 동충하초균의 연구 방법 2. 동충하초의 배양 (5) 동충하초균의 시험관 균주배양에 대한 원고를 작성하여 보았다. 대개 버섯에서 균주를 얻으려면 조직 분리를 하여 균주를 얻는다. 그러나 동충하초는 크기가 작고 조직이 단단하고 배지에서 잘 자라지 않으므로 나는 주로 포자를 이용하여 균을 분리한다. 또 종류도 많고 모두 처음 보는 동충하초가 많으므로 조직에서 분리하면 내가 원하는 균인지를 알려면 자실체를 형성시키어야 알 수 있으므로 포자를 이용하여 분리한다. 분리된 균은 다음 연구를 위하여 시험관에서 배양하고 다른 균이 들어가지 않도록 주의를 하여야 한다. 동충하초를 연구하기 위하여 집중하여 생각하다 보면 내 머릿속에 길이 나오는데 그대로 하면 된다. 동충하초 연구를 하면서 이러한 경험을 많이 하여 지금까지 잘하고 있다고 본다. 시험관에서 자라는 동충하초균도 참 아름답다.

 

오늘은 동충하초가 시험관과 싸레에서 형성되는 사진을 올려놓고 서두르지 않고 즐겁게 내가 하는 일에 바르고 천천히 흔들림이 없이 그냥 가려고 한다. 우리 모두 사는 동안 최선을 다해 후회 없는 삶을 살았으면 좋겠습니다. 그저 물처럼 흐르는 인생으로 늘 행복하고 웃음 가득 찬 나날이 되기를 기원합시다. 더욱 건강하시고, 범사가 잘 되는 복을 누리시기를 기원합니다. 고맙고 고맙습니다.

 

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II. 한국의 동충하초. 동충하초균의 연구 방법 2. 동충하초의 배양 (5) 동충하초균의 시험관 균주배양

 

(5) 동충하초 시험관 균주배양

동충하초 균주의 증식용 배지는 고체배지로 사용되는 감자한천배지와 SDAY(Sabouraud dextrose(or maltose) agar + yeast extract)를 주로 사용한다. 감자한천배지는 감자 200g을 물 1000ml에 넣고 30분간 끓인 다음에 설탕 20g, 한천 18g을 넣어서 만들 수 있으나 감자한천배지를 제품화된 것도 있으나 값이 비싸다. SDAY는 포도당(혹은 엿) 40g, 펩톤 10g, 효모 추출물 10g 그리고 한천 15g을 삼각 플라스크에 넣고 물 1,000mL를 넣어 흔들어 만든다. 이렇게 만든 배양기를 이용하여 균을 배양하고 필요할 때 모균주로 사용하는데, 번데기 동충하초균은 감자한천배지에서 균사의 생장은 좋으나, 벌동충하초 균은 감자한천배지에 에서 균사가 생장하기보다는 균핵을 만들어 자좌를 형성하는 등 종과 배지에 따라 자실체 형성 특성이 다르다.

 

(5) Test tube culture of Cordyceps

Solid nutrient agar media such as PDA or Sabouraud dextrose (or maltose) agar plus yeast extract (SDAY, SMAY) are used to culture insect fungi. Potato dextrose agar is prepared by boiling 200g of potato in 1000 ml of water for 30 min, and then adding 18g of dextrose and 18g of agar to the roughly filtered broth and then autoclaving for 30 min. SDAY is prepared in 2 liter flask by adding 40g of glucose (or maltose for SDAY) 10g of peptone 10g of yeast extract, 15g of agar, and 1000 ml of water, and then autoclaving for 30 min. The growth patterns of insect fungi are more or less characteristic for each species as shown in Figs. 1. PDA cultures of entomopathogenic fungi. From left to right, Cordyceps militaris (the first seven tubes and 9th), C. pruinosa (8th ), Ophiocordyceps sphecocephala (10th, 11th) and B. scarabaeidicola (the last two). Fig 2. Good mycelial growth of Cordyceps militaris was observed on PDA (Figs. 2), whereas O. sphecocephala formed a mycelial mass on which stromata also appeared and also produced little proliferative mycelial growth on PDA (Fig. 3).